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應(yīng)用案例
ECLIPSE Ts2-FL倒置熒光顯微鏡在活死細胞雙色熒光染色(AO-PI法)檢測方案
更新時間:2026-07-30
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ECLIPSE Ts2-FL倒置熒光顯微鏡在活/死細胞
雙色熒光染色(AO/PI 法)檢測中的應(yīng)用解決方案
基于 LED 復(fù)眼透鏡均勻照明與遮光系統(tǒng)的規(guī)范化細胞活性分析指南
一、 應(yīng)用背景與 AO/PI 雙色熒光檢測原理
在細胞毒理學(xué)評估、原代細胞計數(shù)、原代組織消化及腫瘤學(xué)研究中,區(qū)分活細胞與死細胞是基礎(chǔ)檢測手段。吖啶橙(Acridine Orange, AO)與碘化丙啶(Propidium Iodide, PI)聯(lián)合使用的 AO/PI 雙色熒光染色法,能夠特異性鑒別帶有質(zhì)膜損傷的死亡細胞與質(zhì)膜完整的存活細胞,尤其在含有大量雜質(zhì)(如紅細胞、細胞碎片)的原代樣品中,比傳統(tǒng)臺盼藍染色具有更高的特異性與準(zhǔn)確度。
1.1 AO 與 PI 熒光探針的作用機制
熒光探針 | 膜穿透特性 | 胞內(nèi)分子靶點與反應(yīng)機制 | 激發(fā)/發(fā)射光譜及適配通道 |
吖啶橙 (Acridine Orange, AO) | 膜透過型 | 可穿透完整活細胞與死細胞膜,與雙鏈DNA結(jié)合后發(fā)出強綠色熒光;與單鏈RNA結(jié)合發(fā)出橙紅熒光 | Ex: 488 nm / Em: 525 nm |
碘化丙啶 (Propidium Iodide, PI) | 非膜透過型 | 無法穿透完整活細胞膜;僅當(dāng)細胞死亡質(zhì)膜破損時進入胞內(nèi),與雙鏈DNA嵌合發(fā)出紅色熒光(產(chǎn)生熒光共振能量轉(zhuǎn)移抑制/遮蓋綠光) | Ex: 535 nm / Em: 617 nm |
二、 Ts2-FL倒置熒光顯微鏡核心硬件與技術(shù)支撐
在雙色熒光定量分析中,視野照度均勻性、信噪比以及操作便捷度直接決定了計數(shù)的精準(zhǔn)性。ECLIPSE Ts2-FL 倒置熒光顯微鏡通過多項光學(xué)設(shè)計為 AO/PI 檢測提供支撐:
2.1 LED 光源與內(nèi)置復(fù)眼透鏡,提供無邊緣光衰的落射熒光
Ts2-FL 采用高亮度落射熒光 LED 光源,并在光路中內(nèi)置復(fù)眼透鏡(Fly-eye lens)。復(fù)眼透鏡能夠有效消除發(fā)光中心與邊緣的照度差異,在視野范圍內(nèi)提供高度一致的光強分布,避免因視野邊緣光衰導(dǎo)致活/死細胞熒光判讀偏差。同時 LED 光源即開即用、無需中心校準(zhǔn)。
2.2 遮光板(Shield Plate)技術(shù),實現(xiàn)明亮實驗室環(huán)境下的高對比度觀察
針對常規(guī)熒光觀察依賴暗室環(huán)境的局限,Ts2-FL 配備了可選的遮光板附件。遮光板能阻擋培養(yǎng)室中的室內(nèi)雜散光,使實驗人員在無需關(guān)閉室內(nèi)照明的情況下,直接觀察并采集高信噪比的 AO/PI 雙色熒光圖像。
2.3 通道光強自動記憶與噪聲消除機制(Noise Terminator)
Ts2-FL 最多可安裝 3 個落射熒光濾光塊。當(dāng)在 GFP/FITC 通道(觀察 AO 標(biāo)記活細胞)與 TRITC 通道(觀察 PI 標(biāo)記死細胞)之間切換時,系統(tǒng)能自動再現(xiàn)之前設(shè)定的各通道激發(fā)光亮度,無需頻繁重新調(diào)節(jié)光強。這既提升了通道切換效率,又有效減緩了熒光探針的淬滅。集成的噪聲消除機制可吸收額外雜散光,提高背景黑度與熒光對比度。
2.4 纖巧抗振機身與人體工程學(xué)控制面板
Ts2-FL 采用緊湊型流線機身(重約 13kg),具備優(yōu)異的抗振特性,可輕松置于超凈工作臺內(nèi)部。透射照明與落射熒光開關(guān)位于前面板,兩側(cè)分別配置透射與熒光亮度調(diào)節(jié)器,避免誤操作。配合高性能機械載物臺(TS2-S-SM)及多樣化托板,可穩(wěn)定承載多孔板、培養(yǎng)皿及血球計數(shù)板。
【Ts2-FL 在 AO/PI 雙色檢測中的光學(xué)優(yōu)勢】 切跖相差(APC)與浮雕反差(Relief Contrast):在無熒光模式下,可使用切跖相差或浮雕反差對較厚標(biāo)本或無染色細胞進行無眩光觀察,快速尋找目標(biāo)聚焦面。 |
三、 AO/PI 雙色熒光檢測標(biāo)準(zhǔn)解決方案流程
為確保 AO/PI 熒光染色的準(zhǔn)確性、降低背景噪音并獲得高重復(fù)性的檢測結(jié)果,建議采用以下規(guī)范化應(yīng)用流程:
步驟 1:試劑配制與樣品準(zhǔn)備
• 工作液配置:將 AO 與 PI 儲存液用 PBS 緩沖液稀釋配制成雙染色工作液(建議終濃度:AO 約 5–10 μg/mL,PI 約 10–20 μg/mL),避光保存。
• 細胞樣品準(zhǔn)備:取待測貼壁或懸浮細胞,用溫育的 PBS 輕輕洗滌,消除培養(yǎng)基成分及細胞碎片干擾。
步驟 2:細胞混合染色與溫育
• 加入染色液:按 1:1 或推薦比例將 AO/PI 混合工作液加入細胞懸液(或直接加入培養(yǎng)孔內(nèi)),使終濃度覆蓋細胞。
• 室溫避光孵育:室溫下避光孵育 5–10 分鐘。由于 AO/PI 結(jié)合迅速,需在 20 分鐘內(nèi)完成圖像采集與計數(shù)。
步驟 3:Ts2-FL 快速上樣與相襯定位
• 放置樣品:將染色后的載玻片、血球計數(shù)板或培養(yǎng)皿置于 Ts2-FL 載物臺上,使用 C-S-HU 通用托板或載玻片托板固定。
• 明場/相襯定位:開啟透射 LED 光源,使用相差或浮雕反差模式(10X 或 20X 物鏡)快速調(diào)整焦距,鎖定代表性視野。
步驟 4:熒光通道切換與圖像采集
• 展開遮光板:展開 Ts2-FL 專有遮光板,阻擋實驗室環(huán)境光。
• GFP/FITC 通道(活細胞):切換至綠光濾光塊,開啟落射熒光,系統(tǒng)自動再現(xiàn)預(yù)設(shè)光強,采集綠色胞質(zhì)/胞核熒光圖像(綠光細胞為活細胞)。
• TRITC 通道(死細胞):切換至紅光濾光塊,采集紅色胞核熒光圖像(紅光細胞為死細胞)。
步驟 5:圖像疊加與定量數(shù)據(jù)分析
• 圖像傳輸:通過 Side Camera Port 掛載的 Digital Sight 系列相機(如 DS-Fi2 / DS-Ri2)實時傳輸圖像。
• 通道疊加與計數(shù):利用 NIS-Elements 圖像分析軟件進行多通道疊加(Overlay/Fusion),自動或手動統(tǒng)計綠光與紅光細胞數(shù)量,計算細胞存活率(Vitality %)。
四、 典型圖像結(jié)果與數(shù)據(jù)評估
在 ECLIPSE Ts2-FL 高品質(zhì)光學(xué)系統(tǒng)的支撐下,AO/PI 雙色染色呈現(xiàn)出清晰的形態(tài)學(xué)與熒光光譜特征:
觀察模式/通道 | 標(biāo)本熒光形態(tài)特征 | Ts2-FL 成像優(yōu)勢表現(xiàn) |
GFP / FITC 通道 | 活細胞 | 復(fù)眼透鏡確保視野中央與邊緣照度一致;高透過濾光塊清晰呈現(xiàn)活細胞形態(tài)與結(jié)構(gòu)。 |
TRITC 通道 | 死細胞 / 膜受損細胞 | 帶噪聲消除機制的濾光塊有效抑制背景自發(fā)熒光,死細胞胞核紅光邊界清晰,判讀準(zhǔn)確。 |
雙通道 Fusion 疊加 / | 綜合存活率評估 | 通道切換無焦平面偏移;遮光板保障明亮房間內(nèi)高信噪比,為準(zhǔn)確計數(shù)提供依據(jù)。 |
五、 規(guī)范操作注意事項與設(shè)備保養(yǎng)建議
5.1 觀察時間控制:染色混合后建議在 20 分鐘內(nèi)完成熒光觀察與圖像采集。孵育時間過長可能導(dǎo)致 AO 濃度變化或 PI 被活細胞內(nèi)吞造成誤判。
5.2 激發(fā)光功率控制:利用 Ts2-FL 的光強自動記憶功能,在滿足圖像拍攝強度的前提下適當(dāng)調(diào)低 LED 激發(fā)功率,以減緩熒光漂白。
5.3 遮光板規(guī)范使用:在明亮室內(nèi)操作時請確保遮光板置于光路上。遮光板及載物臺表面若沾染染色液,應(yīng)用濕潤無塵紙擦拭干凈。
5.4 鏡片維護保養(yǎng):高倍物鏡(如 20X、40X)前透鏡表面需定期檢查,若沾有灰塵或培養(yǎng)基,應(yīng)用氣吹或?qū)S玫臒o塵紙沾取無水乙醇輕輕擦拭,保持優(yōu)良的透光性能。